Статья:

ИЗУЧЕНИЕ ДИНАМИКИ РОСТА И БИОЛОГИЧЕСКИХ СВОЙСТВ БАКТЕРИИ Bacillus sp. F, ВЫДЕЛЕННОЙ ИЗ ВЕЧНОЙ МЕРЗЛОТЫ

Конференция: L Студенческая международная научно-практическая конференция «Естественные и медицинские науки. Студенческий научный форум»

Секция: Биология

Выходные данные
Медведева О.О. ИЗУЧЕНИЕ ДИНАМИКИ РОСТА И БИОЛОГИЧЕСКИХ СВОЙСТВ БАКТЕРИИ Bacillus sp. F, ВЫДЕЛЕННОЙ ИЗ ВЕЧНОЙ МЕРЗЛОТЫ // Естественные и медицинские науки. Студенческий научный форум: электр. сб. ст. по мат. L междунар. студ. науч.-практ. конф. № 4(50). URL: https://nauchforum.ru/archive/SNF_nature/4(50).pdf (дата обращения: 22.11.2024)
Лауреаты определены. Конференция завершена
Эта статья набрала 4 голоса
Мне нравится
Дипломы
лауреатов
Сертификаты
участников
Дипломы
лауреатов
Сертификаты
участников
на печатьскачать .pdfподелиться

ИЗУЧЕНИЕ ДИНАМИКИ РОСТА И БИОЛОГИЧЕСКИХ СВОЙСТВ БАКТЕРИИ Bacillus sp. F, ВЫДЕЛЕННОЙ ИЗ ВЕЧНОЙ МЕРЗЛОТЫ

Медведева Ольга Олеговна
студент, Московский государственный университет пищевых производств, РФ, г. Москва
Храмов Роберт Николаевич
научный руководитель, канд. физ.-мат. наук, ведущий научный сотрудник, Институт теоретической и экспериментальной биофизики РАН, РФ, г. Пущино
Рукавцова Елена Борисовна
научный руководитель, д-р. биол. наук, старший научный сотрудник, Филиал Института биоорганической химии им. академиков М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова РАН, РФ, г. Пущино
Захарченко Наталья Сергеевна
научный руководитель, канд. биол. наук, старший научный сотрудник, Филиал Института биоорганической химии им. академиков М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова РАН, РФ, г. Пущино

 

В последнее время возрос интерес к микробиологическим препаратам для повышения продуктивности, а также устойчивости растений к бактериальным и грибным фитопатогенам. Одним из путей решения этой задачи является разработка методов защиты растений от фитопатогенов с помощью их колонизации ассоциативными микроорганизмами, которые устанавливают с растениями прочную симбиотическую связь. Ассоциативные микроорганизмы оказывают стимулирующее влияние на рост и урожай растений за счет способности к азотфиксации, образования физиологически активных веществ, мобилизации питательных элементов из почвы [1]. Расширение спектра полезных ассоциативных микроорганизмов является важной задачей современной биотехнологии.

Бактерия Bacillus sp.F выделена из вечномерзлых песков Мамонтовой горы (Центральная Якутия) более 10 лет назад [2]. Показано, что эти бактерии являются факультативными анаэробами, представляют собой грамположительные спорообразующие палочки, предпочитают температуру культивирования 370С. Штамм Bacillus sp.F является близкородственным к B. cereus, B. simplex, B. macroides, гомология с 16S rRNA которых составляет 96-97%. Полное секвенирование генома позволило определить, что Bacillus sp. F обладает высоким уровнем гомологии с некоторыми штаммами Bacillus cereus [2].

Целью нашей работы являлось исследование физиолого-биологических характеристик бактерии Bacillus sp. F, таких как скорость роста, антибиотические и антифунгальные свойства, способность к ассоциации с растениями.

Бактериальную культуру Bacillus sp. F выращивали в жидкой среде Лурия-Бертани (LB) на орбитальном шейкере (ИБП РАН) при 370С, 130 об/мин. Вначале вносили 1мл ночной культуры с титром 1х1011 колониеобразующих единиц (КОЕ)/мл в 100 мл жидкой среды LB. Оптическую плотность культуры определяли при 600 нм на спектрофотометре Specol 221 (рис. 1).

Динамику роста культуры определяли с помощью подсчета колоний. В определенные промежутки времени отбирали пробы, разводили в 106 раз жидкой средой LB, шпателем втирали по 100 и 200 мкл разведенной культуры в чашки Петри с рыбно-пептонной агаризованной средой (РПА). Определяли КОЕ в 1 мл культуры бактерий по формуле: (число колоний, выросших после разведения х коэффициент разведения)/объем разведенной суспензии для посева. Параллельно для некоторых точек роста было определено количество клеток в культуральной жидкости на цитофлуориметре NovoCyte (Agilent, США). Судя по динамике роста бактерий, рост клеток прекращался через 24-30 часов после начала культивирования (рис. 2).

 

Рисунок 1. Динамика изменения оптической плотности Bacillus sp. F при периодическом культивировании

 

Рисунок 2. Динамика роста бактерий Bacillus sp. F при периодическом культивировании

 

Таким образом, анализ роста исследуемых бактерий показал, что оптимальным сроком культивирования штамма Bacillus sp. F является 24 часа, поскольку в этот период компоненты питательной среды активно потреблялись и полностью использовались бактериями. Рост культуры замедлялся после максимального накопления биомассы (6 часов) в конце экспоненциальной фазы, затем наблюдалось снижение роста бактерий (рис. 1, 2).

Эксперименты по колонизации растений проводили следующим образом. Молодые побеги табака в культуре in vitro обрабатывали суспензией бактерий с титром 103–104 КОЕ/мл и культивировали в пробирках на безгормональной агаризованной среде Мурасиге-Скуга (МС) при температуре 22-240С, 16-часовом световом дне и освещенности 2.5 клк. Проростки размножали черенкованием раз в месяц. Показана стимуляция роста колонизированных растений (рис. 3).

 

1              2           3          4  

Рисунок 3. Стимуляция роста колонизированных бактериями Bacillus sp. F побегов табака. 1, 2 – неколонизированные растения (контроль); 3,4 – растения, колонизированные Bacillus sp.F.

 

Тестирование эксплантов (листьев или корней) на наличие ассоциированных бактерий проводили через 7 и 14 суток после колонизации. С этой целью растительный экстракт, полученный путем гомогенизации 1 г растительной ткани, наносили на поверхность твердой питательной среды РПА в чашках Петри и инкубировали при температуре 370С в течение 2 сут, затем проводили подсчет колониеобразующих единиц (КОЕ). Через 7 и 14 сут после колонизации табака бактериями их численность на корнях увеличивалась с 2.2 х 103 (7 сут) до 2.3 х 104 (14 сут) КОЕ/г сырой массы. В последующих циклах микроразмножения растений содержание бактерий в корнях сохранялось практически на одном уровне, что указывает на их прочную ассоциацию с растениями.

Определение антибактериальной активности бактерий Bacillus sp. F проводили с использованием метода радиальной диффузии [3]. Ночную культуру бактерий центрифугировали и полученный супернатант вносили в лунки, сделанные в агаре, на поверхность которого были нанесены патогенные бактерии. Чашки Петри выдерживали 5 часов при 40С для диффузии внесенной жидкости в агар, а затем переносили в термостат на 280С. В качестве патогенных микроорганизмов использовали бактерии Rhodococcus equi BKМ АС-953, вызывающие заболевания верхних дыхательных путей у животных, а также у человека при ослабленном иммунитете (рис. 4А). С целью определения антифунгальной активности бактерий Bacillus sp. F, на одной чашке Петри со средой РПА одновременно выращивали бактерию и гриб Gaeumannomyces graminis var. tritici Ggt1818, вызывающий гнили корней и основания листьев у растений. Ограничение роста гриба по отношению к бактериям свидетельствовало о наличии антифунгальных веществ, выделяемых бактериями (рис. 4Б).

 

   

А                                                         Б

Рисунок 4. Проявление антагонизма бактериями Bacillus sp. F. А – антибиотическая активность культуральной жидкости Bacillus sp. F по отношению к бактериям Rhodococcus equi BKМ АС-953 (видна прозрачная зона лизиса вокруг лунок); Б – антифунгальная активность бактерии Bacillus sp. F (справа) по отношению к грибу Gaeumannomyces graminis var. tritici Ggt1818 (слева).

 

Таким образом, нами исследованы биологические свойства бактерии Bacillus sp. F. Определена динамика роста бактерий при периодическом культивировании. Впервые показана возможность образования прочных ассоциаций с растениями, что улучшило рост растений. Установлены штаммы патогенных для человека и растений бактерий и грибов, рост которых подавлялся с помощью Bacillus sp. F. Полученные результаты указывают на возможность использования этих бактерий для защиты растений от фитопатогенов, а также в ветеринарии и медицине в качестве пробиотика.

 

Список литературы:
1. Пиголева С.В. Влияние ассоциативных микроорганизмов на рост и устойчивость растений к ксенобиотикам и фитопатогенам / С.В.Пиголева, Н.С. Захарченко, О.В. Фурс др. / Прикладная биохимия и микробиология. – 2020. – Т. 56, № 4. – С. 390–400.
2. Брушков А.В. Биогеохимия мерзлых пород Центральной Якутии / А.В. Брушков, В.П. Мельников, М.В. Щелчкова и др. / Криосфера Земли. – 2011. – Т. XV, № 4. – С. 90–100.
3. Ohshima M. Enhanced resistance to bacterial diseases of transgenic tobacco plants overexpressing sarcotoxin IA, a bactericidal peptide of insect / M. Ohshima, I. Mitruhara, M. Okamoto et al. / J. Biochem. –1999. – Vol. 125, № 3. – P. 431–435.