Статья:

Биоплёнки Staphylococcus aureus в медицинской практике. Образование биоплёнок S. aureus на полиэтилентерефталате в лабораторных условиях

Конференция: XLVII Международная научно-практическая конференция «Научный форум: медицина, биология и химия»

Секция: Микробиология

Выходные данные
Кузьмицкая А.А. Биоплёнки Staphylococcus aureus в медицинской практике. Образование биоплёнок S. aureus на полиэтилентерефталате в лабораторных условиях / А.А. Кузьмицкая, Д.С. Угарова, А.В. Жилина, С.С. Салтыкова, Д.Ю. Побережный, С.В. Калёнов // Научный форум: Медицина, биология и химия: сб. ст. по материалам XLVII междунар. науч.-практ. конф. — № 10(47). — М., Изд. «МЦНО», 2021. — С. 4-11.
Конференция завершена
Мне нравится
на печатьскачать .pdfподелиться

Биоплёнки Staphylococcus aureus в медицинской практике. Образование биоплёнок S. aureus на полиэтилентерефталате в лабораторных условиях

Кузьмицкая Александра Андреевна
магистрант, кафедра биотехнологии, Российский химико-технологический университет имени Д. И. Менделеева, РФ, г. Москва
Угарова Дарья Сергеевна
фельдшер скорой медицинской помощи, ГБУЗ МО «МОССМП», РФ, г. Москва
Жилина Анна Валерьевна
студент, кафедра биотехнологии, Российский химико-технологический университет имени Д. И. Менделеева, РФ, г. Москва
Салтыкова Софья Сергеевна
магистрант, кафедра молекулярной и клеточной биологии, Московский физико-технический институт, РФ, г. Москва
Побережный Даниил Юрьевич
аспирант, ведущий инженер, кафедра биотехнологии, Российский химико-технологический университет имени Д. И. Менделеева, РФ, г. Москва
Калёнов Сергей Владимирович
канд. техн. наук, доцент, кафедра биотехнологии, РХТУ им. Д. И. Менделеева, Российский химико-технологический университет имени Д. И. Менделеева, РФ, г. Москва

 

STAPHYLOCOCCUS AUREUS BIOFILMS IN MEDICAL PRACTICE.

BIOFILM FORMATION OF S. AUREUS ON POLYETHYLENE TEREPHTHALATE UNDER LABORATORY CONDITIONS

 

Alexandra Kuzmitskaya

Student of the Master's Degree, Department of Biotechnology, Mendeleev University of Chemical Technology, Russia, Moscow

Daria Ugarova

Ambulance paramedic, the SBI of health care of the Moscow region «Moscow regional ambulance station», Russia, Moscow

Anna Zhilina

Undergraduate student, Department of Biotechnology, Mendeleev University of Chemical Technology, Russia, Moscow

Sofya Saltykova

Student of the Master's Degree, Department of Molecular and Cellular Biology, MIPT, Russia, Moscow

Daniil Poberezhniy

Postgraduate, lead engineer, Department of Biotechnology, Mendeleev University of Chemical Technology, Russia, Moscow

Sergey Kalenov

Candidate of Engineering Sciences, docent, Department of Biotechnology, Mendeleev University of Chemical Technology, Russia, Moscow

 

Аннотация. Staphylococcus aureus является возбудителем множества заболеваний и обладает способностью образовывать биоплёнки на поверхности различных медицинских изделий, в том числе изготовленных из PET. Колонизация бактериями поверхности полимерного имплантата приводит к нарушению его функций и развитию инфекционных процессов в организме. Переход микроорганизмов из свободного планктонного состояния в состояние биоплёнки – сложный, труднорегулируемый процесс, зависящий от многих факторов. В лабораторных условиях с целью проведения дальнейших исследований была получена биоплёнка S. aureus на поверхности полиэтилентерефталата.

Abstract. Staphylococcus aureus causes many diseases and has the ability to form biofilms on the surfaces of various medical devices, including those made from PET. Bacterial colonization of the surface of the polymer implant leads to impairment of its functions and the development of infectious processes in the body. The transition of microorganisms from a free planktonic state to a biofilm state is a complex, difficult to regulate process that depends on many factors. The biofilm of S. aureus on the surface of polyethylene terephthalate has been obtained under laboratory conditions for the purpose of further research.

 

Ключевые слова: Staphylococcus aureus; биоплёнки; кворум-сенсинг; полиэтилентерефталат.

Keywords: Staphylococcus aureus; biofilms; quorum sensing; polyethylene terephthalate.

 

Staphylococcus aureus – неподвижные, грамположительные, факультативно анаэробные кокки, расположенные поодиночке или кластерами в виде «гроздьев винограда». Они хорошо растут на питательных средах с повышенным содержанием NaCl (~10-15%). Образуют выпуклые, гладкие, блестящие, полупрозрачные колонии жёлтого цвета, с ровными краями [1].

С медицинской точки зрения Staphylococcus aureus является важным для исследований модельным объектом. Обычно это доброкачественные комменсалы наружных покровов тела человека, но довольно опасные при проникновении внутрь организма. Вызывают широкий спектр заболеваний: от незначительных кожных инфекций (фурункулёз, импетиго, фолликулит и др.) до смертельных болезней (например, эндокардит, синдром токсического шока, сепсис) [2].

Возбудителями многих нозокомиальных инфекций являются штаммы золотистого стафилококка, обладающие множественной антибиотической устойчивостью (MRSA – multidrug-resistant S. aureus). Дыхательные, мочевыводящие пути, раны и кровоток являются основными очагами внутрибольничных инфекций. Пациенты, которым была проведена катетеризация или которым потребовалось хирургическое вмешательство, подвержены более высокому риску инфицирования [3].

Бактериальные инфекции, связанные с имплантами, в зависимости от происхождения классифицируются на: периоперационные (бактериальная колонизация во время операции), смежные (заражение раны) и гематогенные (распространение бактерий через кровь и лимфатические узлы) [4].

S. aureus образует биоплёнки на поверхностях многих предметов, включая внутрисосудистые устройства и импланты. Клетки при этом прикреплены и к поверхности объекта, и друг к другу. Формирование биоплёнок микроорганизмов определяется: типом самих микроорганизмов, доступностью питательных веществ, характеристиками субстрата, к которому они прикрепляются. Осаждение белков организма-хозяина на поверхности медицинского устройства происходит сразу же после его размещения внутри тела, что в дальнейшем приводит к необратимому прикреплению бактерий и образованию ими биоплёнок. После достижения значительной плотности популяции некоторые фрагменты биоплёнки могут отсоединяться, распространяясь кровотоком по всему организму. Связанные с имплантатами биоплёнки нарушают их нормальное функционирование и вызывают развитие инфекционных процессов [4], [5].

Одним из механизмов, определяющих созревание и распространение биоплёнок Staphylococcus aureus, является кворум-сенсинг (QS – quorum sensing). Бактерии общаются посредством производства диффундирующих сигнальных молекул, называемых аутоиндукторами. Эти молекулы производятся на базальном уровне и накапливаются во время роста микроорганизмов. После достижения критической концентрации аутоиндукторы могут активировать или репрессировать ряд генов-мишеней. Контроль экспрессии генов с помощью аутоиндукторов зависит от плотности клеток в популяции. Кворум-сенсинг позволяет S. aureus проводить мониторинг окружающей среды на предмет наличия других бактерий и регулировать своё «поведение» в масштабах всей популяции в ответ на изменение её численности или появление новых видов, входящих в состав сообщества [6].

Грамположительные бактерии общаются, используя модифицированные олигопептиды в качестве аутоиндукторов (АИП) и двухкомпонентные мембраносвязанные сенсорные гистидинкиназы в качестве рецепторов. Передача сигналов опосредуется каскадом фосфорилирования, который влияет на активность ДНК-связывающего транскрипционного регуляторного белка, называемого регулятором ответа. Пептиды не могут свободно диффундировать через мембрану, следовательно, их высвобождение опосредуется специализированными белками-экспортёрами. В большинстве случаев выделение олигопептидов сопровождается их обработкой и модификацией, т.е. процессингом (превращением в АИП). Стратегия, которую использует Staphylococcus aureus, состоит в следующем: (1) при низкой плотности популяции вырабатываются адгезины, которые помогают бактериям прилипать к поверхности имплантата; (2) при высокой плотности популяции репрессируется ген-регулятор, производится больше токсинов, которые повреждают окружающие ткани, и ферментов, которые помогают бактериям отделиться от биоплёнки и колонизировать новые участки [7]. 

Полиэтилентерефталат (PET) является одним из самых распространённых полимеров, широко используемых в биомедицинских технологиях. Это термопластичный полиэфир, состоящий из двух мономеров: этиленгликоля и терефталевой кислоты. Получают его переэтерификацией диметилтерефталата с этиленгликолем. Применение PET в клинической практике включает в себя: волокна, нити, сердечные клапаны, хирургические сетки, каркасы, мочевые катетеры и катетеры кровотока. Биосовместимость, высокая однородность, механическая прочность, устойчивость к химическим веществам и истиранию – всё это делает полиэтилентерефталат перспективным материалом для многих направлений биомедицины [8-10]. Тем не менее, поверхности PET подвержены контаминации микроорганизмами. Так, Staphylococcus aureus считается основным источником инфекционных процессов, связанных с сердечными клапанами и желудочковыми вспомогательными устройствами [4], [11].

В биоплёнках присутствуют внеклеточные полимерные вещества (EPS – extracellular polymeric substances), экспрессируемые бактериями и материалом поверхности медицинского изделия. Развитый EPS-матрикс формирует барьер, устойчивый к воздействию антибиотиков. Бактерии, находясь под защитой EPS-матрикса, необратимо прикрепляются к материалу, интенсивно размножаются и образуют зрелую биоплёнку. Большинство клеток в матрице зрелой биоплёнки находятся в «спящем состоянии» или медленно реплицируются. Когда бактерии внутри биоплёнки имеют медленную скорость роста, транспорт антибиотиков в биоплёнку тоже снижается. Например, чтобы уменьшить количество колоний Staphylococcus aureus в биоплёнке в 1000 раз, необходимо увеличить минимальную бактерицидную концентрацию антибиотика ванкомицина более чем в 10 раз [4], [11-12].

Был проведён эксперимент по получению биоплёнки Staphylococcus aureus на поверхности PET в лабораторных условиях. В качестве посевного материала использовалась биомасса штамма S. aureus (рис. 1), вносившаяся в колбу с жидкой модифицированной питательной средой LB состава: 2 г/л дрожжевой экстракт; 10 г/л триптон; 0,2 г/л MgSO4·7H2O; 0,5 г/л NaCl. Углеводы ингибируют адгезивные способности золотистого стафилоккока [13], поэтому их содержание в питательной среде минимизировалось.

 

Рисунок 1. Окрашивание культуры S. aureus по Граму

 

В инокулированную питательную среду помещалась стерилизованная 70%-ным этиловым спиртом пластина PET размером 3×3 см, толщиной 0,03 см. С помощью абразива одному краю пластины предварительно была придана шероховатость. Культивирование осуществлялось в шейкере-инкубаторе Minitron Infors-HT при скорости перемешивания 150 об/мин и температуре 28ºC в течение 5 дней. По истечении срока культивирования на обработанном краю пластины наблюдалось активное образование биоплёнок Staphylococcus aureus (рис. 2). Из-за большей площади, доступной для адгезии, шероховатые поверхности колонизируются микроорганизмами быстрее, чем гладкие [14].

 

Рисунок 2. Образование биоплёнки S. aureus на поверхности PET-пластины

a) – через 1 сутки после начала культивирования б) – через 5 суток после начала культивирования

 

Полученная система S. aureus-полиэтилентерефталат может служить основой для дальнейшего изучения динамики развития биоплёнок Staphylococcus aureus, влияния на них различных антибиотиков, пептидов или супернатантов штаммов микроорганизмов, которые продуцируют внеклеточные ферменты, ингибирующие развитие биоплёнок [15-17].

 

Список литературы:
1. Kloos W. E., Schleifer K. H., Genus IV S. R. 18AL, Nom. Cons. Opin. 17 Jud. Comm. 1958, 153 // Bergey’s Manual of Systematic Bacteriology. – 1884. – V. 2.
2. Narayana J. L., Gopal J., Wu H. F. Wound infection kinetics probed by MALDI-MS: rapid profiling of Staphylococcus aureus in mice // Analyst. – 2012. – V. 137. – № 14. – P. 3372-3380.
3. Foster T. J. The Staphylococcus aureus “superbug” // J. Clin. Invest. – 2004. – V. 114. – № 12. – P. 1693-1696.
4. Nandakumar V. et al. Characteristics of bacterial biofilm associated with implant material in clinical practice // Polymer journal. – 2013. – V. 45. – № 2. – P. 137-152.
5. Yongsunthon R., Fowler Jr V. G., Lower S. K. Binding forces associated with Staphylococcus aureus biofilms on medical implants // Camesano T. A., Mello C. M. (eds) Microbial Surfaces. Structure, Interactions, and Reactivity. – ACS, 2008. – P. 189-197.
6. Antunes L. C. M. et al. Quorum sensing in bacterial virulence // Microbiology. – 2010. – V. 156. – № 8. – P. 2271-2282.
7. Waters C. M., Bassler B. L. Quorum sensing: cell-to-cell communication in bacteria // Annu. Rev. Cell Dev. Biol. – 2005. – V. 21. – P. 319-346.
8. Rajendran S., Anand S. C. Woven textiles for medical applications // Gandhi K. L. (eds) Woven Textiles. – Woodhead Publishing, 2020. – P. 441-470.
9. Nair K., Muraleedharan C. V., Bhuvaneshwar G. S. Developments in mechanical heart valve prosthesis // Sadhana. – 2003. – V. 28. – № 3. – P. 575-587.
10. Swar S. et al. Biocompatible surface modification of poly (ethylene terephthalate) focused on pathogenic bacteria: Promising prospects in biomedical applications // Journal of Applied Polymer Science. – 2017. – V. 134. – № 26.
11. Çaykara T. et al. Exploring the potential of polyethylene terephthalate in the design of antibacterial surfaces // Medical microbiology and immunology. – 2020. – V. 209. – № 3. – P. 363-372.
12. Williams I. et al. The effects of adherence to silicone surfaces on antibiotic susceptibility in Staphylococcus aureus // Microbiology. – 1997. – V. 143. – № 7. – P. 2407-2413.
13. Фалова О. Е. Влияние углеводов на интенсивность адгезии золотистого стафилококка // Вестник новых медицинских технологий. – 2011. – Т. 18. – № 1. – С. 11-12.
14. Scheuerman T. R., Camper A. K., Hamilton M. A. Effects of substratum topography on bacterial adhesion // Journal of colloid and interface science. – 1998. – V. 208. – № 1. – P. 23-33.
15. Хмель И. А., Белик А. С., Зайцева Ю. В., Данилова Н. Н. Quorum sensing и коммуникация бактерий // Вестник Московского университета. Серия 16: Биология. – 2008. – № 1. – С. 28-35.
16. Гриценко В. А., Зурочка В. А., Зурочка А. В. [и др.] Влияние синтетического пептида активного центра гранулоцитарно-макрофагального колониестимулирующего фактора (ГМ-КСФ) на формирование биоплёнок клиническими изолятами стафилококков // Бюллетень Оренбургского научного центра УрО РАН. – 2015. – № 4.
17. Park J. H. et al. Extracellular protease in Actinomycetes culture supernatants inhibits and detaches Staphylococcus aureus biofilm formation // Biotechnology letters. – 2012. – V. 34. – № 4. – P. 655-661.